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                CoIP實驗常見問題

                更新時間:2024-09-03      點擊次數:610

                免疫(共)沉淀(IP/CoIP)是基于抗體和蛋白的特異性親和作用,通過捕獲與蛋白或抗原特異性結合的抗體,進而從復雜的樣品中捕獲及富集目標蛋白,同時可以測定與之相互作用的蛋白或其它生物大分子。

                 

                CoIP原理圖

                 

                CoIP實驗對照的設置方法

                 

                常見的主要有三種方式:

                1)第一種是實驗組轉染誘餌蛋白和標簽蛋白,對照組只轉染標簽蛋白,這種方法不僅可以提高誘餌蛋白的表達量,增加實驗的成功率,而且標簽抗體的成本低,親和力強,但是畢竟不是本身生理狀態下的表達量,和實際結果可能有出入,而且需要構建載體,更適用于誘餌蛋白表達量低或者沒有IP抗體的情況;

                2)第二種是選擇IP抗體的對照IgG抗體,這種方式下,誘餌蛋白的表達處于天然狀態,更接近真實情況,但是相應的可能出現表達量低,成功率不高的情況,同時需要IP級別的抗體;

                3)第三種就是用敲除誘餌蛋白的細胞作對照樣本,這種情況下,實驗組也是在天然條件下,可信度高,但是實驗所需的周期較高,要進行敲除驗證。

                 

                1、CoIP試劑盒中樣本裂解液可以用WB的裂解液替代嗎?

                不可以,CoIP的裂解液中一般不含SDS,SDS是一種強效的去垢劑,它能夠破壞蛋白質之間的非共價相互作用,使蛋白質變性,這會導致原本相互作用的蛋白質復合體解離。

                 

                2、COIP樣本裂解后蛋白濃度一般能達到多少?

                不低于1mg/mL,如果蛋白濃度過高,可用pbs稀釋。

                 

                3、瓊脂糖珠中Protein A和Protein G有何區別,都要加嗎?

                一般建議都加,Protein A與兔源抗體親和力高,Protein G與鼠源抗體親和力高。


                4、抗體、樣本、磁珠的加入順序比較?

                第一種抗體先于蛋白結合,再加入磁珠,第二種抗體先與磁珠孵育,最后加入蛋白,第三種同時加入,一般情況下第一種與第二種相差不大,如果蛋白量過高,比如大于1000ug,建議使用第二種,否則蛋白容易吸附在磁珠上,降低得率。

                 

                5、Input組要跑內參嗎?

                當然,Input組跑內參不僅可以協助判斷操作,對樣本是否降解也有提示作用。

                 

                IP/CoIP結果判讀及常見問題

                 

                1、CoIP結果如何判讀?

                 

                 

                IB:即免疫印跡,也就是常規的Western Blotting,用于顯示目的蛋白;

                IP:即免疫沉淀,這一步主要是為了純化富集目的蛋白;

                Input:全細胞裂解液,含有細胞內所有的蛋白,可認為是陽性組。也就是處理完樣本得到的細胞裂解液,在做IP實驗之前,需要先跑WB,確認樣本中含有蛋白A和蛋白B;

                Anti-A:A蛋白的免疫共沉淀抗體;

                IgG:Anti-A的同型對照抗體,即跟Anti-A同來源同種型,如Anti-A是兔來源IgG型,則同型對照抗體需要選擇Rabbit IgG(abs20035)。

                 

                結果圖解析

                 

                該結果是為驗證蛋白A與蛋白B是否存在相互作用。本實驗一共分為兩大組:Input組及IP組,其中IP組又分為IgG組(陰性對照組)和實驗組,并通過WB去驗證蛋白A和B在每一個組里面是否存在。由Input組的條帶可以得到結論:蛋白A與蛋白B都是存在的,證明樣本處理提取蛋白的步驟沒有任何問題。陰性對照IgG組和實驗組平行進行免疫沉淀實驗,結果蛋白A與蛋白B均沒有條帶,說明利用IgG抗體沒有把蛋白A和B沉淀下來,證明蛋白A和B與IgG沒有結合,排除了蛋白與抗體非特異性結合的可能性;而實驗組蛋白A和B均有條帶,表示利用蛋白A的抗體進行沉淀實驗,成功把蛋白A沉淀下來了,與此同時蛋白B也被沉淀下來,進而得到結論:蛋白A與蛋白B之間存在相互作用。

                 

                2、input組無條帶,IP組有條帶

                 

                 

                可能由于目標蛋白在樣本中的豐度較低或存在降解現象,這導致在Input組中未能成功檢測到該蛋白,而在IP組經過富集后能夠檢測到。建議適當提高Input組的上樣量,進行常規的WB驗證,并在樣本處理階段添加蛋白酶抑制劑以穩定蛋白質。

                 

                3、雜帶問題

                 

                非特異性條帶要分情況分析,如果是input和IP組、IgG組都有雜帶,可能是磁珠的非特異性結合,樣本上樣量過高、或者抗體濃度過高造成的非特異性結合,建議實驗前對磁珠進行漂洗,實驗過程中增加洗滌次數,使用合適的樣品和抗體濃度。如果IgG組和IP組無雜帶,Input有雜帶,可能由于WB抗體的特異性不夠好,實際實驗中可能考慮的因素可能要更多。

                 

                 

                4、IP和IgG組均無條帶

                 

                可能由于IP抗體加入的量少,ip抗體特異性差,或者蛋白量過高,優先覆蓋住beads,導致IP抗體和Beads的集合較少等,可以優先通過增加抗體用量和優化結合順序入手,實在沒有改善只能更換抗體進行嘗試。

                 

                 

                5、輕重鏈問題

                 

                 

                在變性洗脫過程中,抗體在高溫和還原劑的影響下分解為重鏈55KD和輕鏈分子25KD,當WB所用的抗體和IP抗體同源時,二抗就會識別到IP抗體的輕重鏈,這是比較常見的一個問題,在抗體選擇時,盡量IP抗體和WB抗體來自不同種屬,當然,即便已經做了這種優化,實驗結果往往還是有輕重鏈,可能是由于二抗的特異性不夠等原因,這種情況下可以采用IP專用的二抗,這種抗體只識別輕鏈或者重鏈,如果目的蛋白在輕鏈附近,選擇只識別重鏈的抗體,或者對于WB實驗,建議使用直標一抗,但需注意直標一抗可能因無二抗信號放大作用,而導致信號較弱或無法曝光的情況。

                 

                注:本文圖片來源于網絡,僅供學習參考用

                 

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