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                實驗小白來集合!染色質免疫共沉淀(ChIP)實驗流程與常見問題

                更新時間:2023-09-14      點擊次數:1257

                染色質免疫共沉淀技術的原理是在活細胞狀態下固定蛋白質-DNA復合物,并將其隨機切斷為一定長度范圍內的染色質小片段,然后通過免疫學方法沉淀此復合體,特異性地富集目的蛋白結合的DNA片段,通過對目的片斷的純化與檢測,從而獲得蛋白質與DNA相互作用的信息。

                 

                一、細胞交聯與裂解


                在裝有20ml生長培養基的150mm培養皿中培養貼壁細胞,長到80%-90%密度,約107個細胞。如有必要,可進行刺激或處理。建議采用1×106個細胞作為一次ChIP的細胞量。

                 

                1)在20ml培養基中加入終濃度為1%的甲醛,輕輕渦旋培養皿混勻,使細胞在甲醛中固定,室溫固定10分鐘(對于轉錄因子和轉錄輔因子,可適當延長交聯時間,但不超過30分鐘)。加入甲醛后培養基的顏色會發生改變;

                2)在培養皿中加入濃度為0.125M的甘氨酸,輕輕渦旋混勻,室溫反應5分鐘,淬滅未反應的甲醛,終止交聯。加入甘氨酸后培養基的顏色會發生改變;

                3)棄培養基,20ml預冷的1×PBS洗滌細胞,重復洗滌一次;

                4)在培養皿中加入2ml 預冷的含蛋白酶抑制劑混合物的1×PBS;使用細胞刮收集細胞,4°C,800g,離心5分鐘;

                5)去除上清液(此步細胞可在液氮中快速冷卻,存放于-80°C保存幾個月),細胞再次重懸于0.5ml含蛋白酶抑制劑混合物的細胞裂解緩沖液中,冰上孵育15分鐘,每5分鐘渦旋一次;

                6)4°C,800g,離心5分鐘。小心去除上清液,加入0.5ml含蛋白酶抑制劑混合物的細胞核裂解緩沖液,使其重懸。


                二、超聲處理片段化 DNA

                 

                超聲處理的效果取決于細胞類型、細胞濃度和儀器。需要通過預實驗確定超聲的最佳條件,以便將交聯DNA剪切為如上圖的約200-1000bp長度。染色質片段化對于ChIP實驗成功很關鍵。片段化不足會導致樣本丟失,片段化過度會破壞靶標蛋白表位、降低ChIP效率。在超聲過程中,保持樣品一直處于冰上低溫狀態。不要使探頭接觸超聲管底部或管壁,如超聲過程產生泡沫,需暫停超聲并調整超聲管位置。

                 

                超聲處理后,4°C,12000g離心10分鐘。離心后,留取5μl染色質溶液進行瓊脂糖凝膠分析,以檢測超聲效率。可將超聲前和超聲后各取的5μl染色質溶液對比分析。


                圖1 超聲前超聲后

                 

                三、靶蛋白和DNA 免疫共沉淀

                 

                將下述緩沖液放于冰上保存:低鹽洗滌緩沖液高鹽洗滌緩沖液,LiCl洗滌緩沖液和TE洗滌緩沖液。配制450μl稀釋緩沖液(含蛋白酶抑制劑混合物),冰上保存。如有多個樣品可合并配制。

                 

                1)取上述50μl離心后的裂解液上清加入到新的離心管中,作為一次免疫沉淀實驗的DNA混合物樣本。每50μl 裂解液中含有1×106個細胞裂解產物。ChIP反應包括陽性對照抗體管、陰性對照IgG管和目的蛋白抗體管。推薦陰性對照IgG和目的抗體使用同一物種來源。

                2)在上述50μl片段化染色質樣品的離心管中加入上述配制好的450μl稀釋緩沖液,充分混勻。每管取5μl樣品于新的離心管中作為實驗的1% “input",用于實驗的優化與數據處理,保存于4°C,直至蛋白DNA復合物洗脫與解交聯步驟。

                3)取完inpμt的離心管中分別加入1-10μg免疫沉淀抗體,4°C轉子上孵育4h以上或過夜。

                4)每個離心管中加入20μl蛋白A/G磁珠(建議將吸頭前端剪去一小部分后再吸取磁珠),4°C轉子上孵育2h。

                5)磁力架吸附,靜置1-2分鐘,去上清。按如下步驟洗滌蛋白A/G磁珠-抗體-蛋白/DNA復合物:

                低鹽洗滌緩沖液,4°C轉子上孵育3-5分鐘,洗滌一次;

                高鹽洗滌緩沖液,4°C轉子上孵育3-5分鐘,洗滌一次;

                LiCl 洗滌緩沖液,4°C轉子上孵育3-5分鐘,洗滌一次;

                 

                注:使用前將等體積A液及B液混勻,請勿提前混勻,否則會導致出現沉淀析出。TE 緩沖液,4°C轉子上孵育3-5分鐘,洗滌一次。


                圖2 靶蛋白和DNA免疫共沉淀示意圖


                四、洗脫和解交聯

                 

                實驗前準備:解凍蛋白酶K;ChIP洗脫緩沖液恢復至室溫,以確保SDS溶解;配制洗脫緩沖液;ChIP洗脫緩沖液100μl+蛋白酶K 1μl(多個樣本可合并配制)。

                1)樣品管及Input管加入ChIP洗脫緩沖液(含蛋白酶K);

                2)62°C孵育2小時;

                3)在95°C下培養10分鐘;

                4)讓樣品冷卻至室溫;

                5)10000g離心10秒收集管蓋及管壁上殘留樣品,采用磁力架分離磁珠。將上清液小心轉移至一個新的試管中。

                 

                五、DNA 純化

                采用純化柱進行DNA純化(免疫沉淀和input)。

                 

                六、鑒定分析

                QPCR或者高通量測序的方法檢測IP得到的DNA。

                 

                七、常見問題

                 

                常見問題

                常見原因/解決辦法

                陰性對照(IgG IP)樣品的背景高

                1、優化抗體的濃度,過量抗體導致非靶點的結合;

                2、與微珠的非特異結合:采用預純化步驟,以排除這些非靶點,或加入微珠的封閉劑;
                3、染色質的不充分斷裂:優化斷裂過程,以獲得長度在200-1000bp的染色質;

                4、試劑被污染;

                5、增加洗滌次數。

                DNA 回收率低

                1、ChIP 抗體失效或親和力低,使用 ChIP驗證過的抗體;

                2、抗體使用量不足;

                3、起始樣品不足,可適當增加起始樣品用量;

                4、過度交聯或交聯不足;
                5、磁珠與抗體的親和力低。

                無法找到合適的ChIP抗體,該如何做ChIP實驗?

                1、使用標簽抗體是一種解決抗體無法獲得、抗體可變性和交聯染色質的表位被遮蔽的方法。不過標簽有可能干擾轉錄因子的功能;

                2、嘗試IP/IHC/IF抗體,效果需要自己摸索鑒定。

                陰性對照抗體如何選擇?

                使用與ChIP抗體相同物種的正常IgG,因此如果使用小鼠單克隆抗體,建議使用正常小鼠IgG。

                 

                貨號

                品名

                規格

                abs50034

                染色質免疫共沉淀(ChIP)試劑盒

                22T

                abs47050830

                甘氨酸

                1kg

                abs961

                10×PBS緩沖液

                500ml

                abs9118

                蛋白酶K

                100mg

                abs9330

                核糖核酸酶 A

                150ul

                 

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